假如判定ELISA的敏捷度，樣品應該著眼于四周的疾病預防控制中央的數據為根據，對敏捷度進行分析，通過對比套件結果與CDC日本腦炎病毒IgM抗體陽性的結果，以及從疾病的發病樣品采集的天數分類，有著明顯的機能差異。
        
存放試劑盒的規定有兩個例外：
 1. 嚴格按照InBios的JE檢測套件規定的樣品格式進行測試，應為一式兩份，并且在本次評測的所有樣品中進行了測試以及選拔后所進行后續測試；
 2. Jacobson的同事提出的類似的方式進行了評估。為了進行評估，黃病毒陽性標本被定性為JE負。定性的參數也很考究的，如時間以及可以測試的樣品數、易用性。此外，該試劑盒協議建議樣品不宜熱滅活，但是，可以在CDC協議樣品中進行加熱，在56℃下持續30分鐘為限，達到滅活不定病毒血清檢測之前的尺度。這樣ELISA試劑盒按照商的指示結果進行計算和分類。 
    PANBIO建議在測試前對所有的樣品進行熱滅活，因此，以確定是否會影響到熱滅活的PANBIO試劑盒，面板的樣品（32 JEV陽性血清和13 JEV陽性腦脊液標本）的正常熱滅活結果與統一時段的套件進行了匹配。就是將樣品稀釋，根據試劑盒中所提供的緩沖區中的指令：CSF和血清分別為1:10和1:100稀釋。
 3. 用于這樣的診斷試劑盒中的將測試條校準碼與校準參數*地關聯的方法包括，首先*地分布多個測試條校準碼和其代表的幾何區在多維校準參數空間。該分布的進行使分配測試條校準碼之一到診斷試劑盒的測試條的量化誤差*地降低。該方法還包括在診斷試劑盒的存儲器中存儲分布的測試條校準碼。
    
抗原在試劑盒中的應用：
    抗原是指能在體內引起免疫反應的物質；某一物質能否成為抗原，首先是由它本身的某些性質決定的?？乖募兌炔桓?，特異性不強；合成抗原一般為多肽片段，缺乏天然抗原所具有的立體結構表位，親和力不高，可能導致相應表位的抗體漏檢：基因重組抗原具有安全、特異性強、親和力高、產量大等特點，是一種比較理想的抗原，但其純化比較挫折。熒光和化學發光測定的敏感度均高于比色測定，標準曲線的線性范圍亦較比色反應寬，測定效果優于常用的比色ELISA。抗體在ELISA中應用的抗體可分為多克隆抗體(多抗)和單克隆抗體(單抗)。
     
    在使用雙單抗一步法時，應注意抗原過剩時的“鉤狀效應”。而單抗僅針對抗體的單一表位，親和力和特異性均較多抗高，且制備技術成熟，產量大，批間差異小，但結合位點的單一也正是其弱點之所在，在雙抗體夾心法中，如包被和指示抗體使用同一單抗，則由于結合位點的缺乏，等閑造成假陰性結果。多為體外的蛋白、病菌等各類物質，椰油機體本身的，如自身免疫缺陷病癥會對自身產生免疫。多抗取白免疫動物的抗血清，制備較簡單，但抗血清成分復雜，除含針對抗原的抗體外，還含有多種其他抗體，親和力和特異性相對要低于單抗，且制備周期長，批間差異較大。主要有3類，即自然抗原、人工合成抗原和基因重組抗原。抗原在ELISA中應用的抗原要求有較高的特異性、親和力和純度。

    
如何判斷ELSIA的靈敏度、穩定性？
     因為各種試劑盒的機能之間沒有明顯的水平差異，但是在InBios試劑盒檢測到的數據體現愈甚的原尺度低（P/N <10）以及介質（10≤P/N<20）CDC JEV IgM抗體陽性標本的XCyton套件。不亂性包含長期不亂性，開蓋不亂性，運輸不亂性，有必要還要添加熱加速不亂性等。拿核酸類試劑來說，敏捷度有的時候叫zui低檢測線，就是拿一個已知濃度樣本稀釋下去，直到試劑盒檢測不出來為止，從而得到該試劑盒敏捷度到什么程度，特異性就是用該試劑盒檢測與目的病原微生物在相同感染部位的陰性樣本，檢測試劑盒是否泛起假陽性結果，精密型比較簡樸，檢測一份接近但高于zui低檢測線樣本重復十次，計算CV值，一般核酸類試劑要求小于5%，酶免不清晰。
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